食品中硒的测定
信息来源：鄂州市发展和改革委员会
日期：2014-11-26
中华人民共和国国家标准
GB 5009.93—2010
食品安全国家标准
食品中硒的测定
National food safety standard
Determination of selenium in foods
中华人民共和国卫生部 发布
2010-03-26 发布 2010-06-01 实施
GB 5009.93—2010
I
前 言
本标准代替GB/T 5009.93-2003《食品中硒的测定》。
本标准所代替标准的历次版本发布情况为：
——GB/T 5009.93-2003；
——GB/T 12399-1996；
——GB 13105-1991。
GB 5009.93—2010
1
食品安全国家标准
食品中硒的测定
1 范围
本标准规定了用氢化物原子荧光光谱法和荧光法测定食品中硒的方法。
本标准适用于食品中硒的测定。
2 规范性引用文件
本标准中引用的文件对于本标准的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本
适用于本标准。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。
第一法氢化物原子荧光光谱法
3 原理
试样经酸加热消化后，在6 mo1/L 盐酸介质中，将试样中的六价硒还原成四价硒，用硼氢化钠或硼
氢化钾作还原剂，将四价硒在盐酸介质中还原成硒化氢（H2Se），由载气（氩气）带入原子化器中进
行原子化，在硒空心阴极灯照射下，基态硒原子被激发至高能态，在去活化回到基态时，发射出特征波
长的荧光，其荧光强度与硒含量成正比。与标准系列比较定量。
4 试剂和材料
除非另有规定，本方法所使用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682 规定的三级水。
4.1 硝酸：优级纯。
4.2 高氯酸：优级纯。
4.3 盐酸：优级纯。
4.4 混合酸：将硝酸与高氯酸按9：1 体积混合。
4.5 氢氧化钠：优级纯。
4.6 硼氢化钠溶液（8 g/L）：称取8.0 g 硼氢化钠（NaBH4），溶于氢氧化钠溶液（5 g/L）中，然后
定容至1000 mL，混匀。
4.7 铁氰化钾（100 g/L）：称取10.0 g 铁氰化钾[（K3Fe（CN）6）]，溶于100 mL 水中，混匀。
4.8 硒标准储备液：精确称取100.0 mg 硒（光谱纯），溶于少量硝酸中，加2 mL 高氯酸，置沸水浴
中加热3 h～4 h，冷却后再加8.4 mL 盐酸，再置沸水浴中煮2 min，准确稀释至1000 mL，其盐酸浓度
为0.1 mo1/L，此储备液浓度为每毫升相当于100 μg 硒。
GB 5009.93—2010
2
4.9 硒标准应用液：取100μg/mL 硒标准储备液1.0 mL，定容至100 mL，此应用液浓度为1μg /mL。
注：也可购买该元素有证国家标准溶液。
4.10 盐酸（6 mol/L）：量取50 mL 盐酸（4.3）缓慢加入40 mL 水中，冷却后定容至100 mL。
4.11 过氧化氢（30 %）。
5 仪器和设备
5.1 原子荧光光谱仪，带硒空心阴极灯。
5.2 电热板。
5.3 微波消解系统。
5.4 天平：感量为 1 mg。
5.5 粉碎机。
5.6 烘箱。
6 分析步骤
6.1 试样制备
6.1.1 粮食：试样用水洗三次，于 60 ℃烘干，粉碎，储于塑料瓶内，备用。
6.1.2 蔬菜及其他植物性食物：取可食部用水洗净后用纱布吸去水滴，打成匀浆后备用。
6.1.3 其它固体试样：粉碎，混匀，备用。
6.1.4 液体试样：混匀，备用。
6.1.5 试样消解
6.1.5.1 电热板加热消解：称取0.5 g～2 g（精确至0.001g）试样，液体试样吸取1.00mL～10.00 mL，
置于消化瓶中，加10.0 mL 混合酸及几粒玻璃珠，盖上表面皿冷消化过夜。次日于电热板上加热，并及
时补加硝酸。当溶液变为清亮无色并伴有白烟时，再继续加热至剩余体积2 mL 左右，切不可蒸干。冷
却，再加5.0 mL 盐酸（4.10），继续加热至溶液变为清亮无色并伴有白烟出现，将六价硒还原成四价
硒。冷却，转移至50 mL 容量瓶中定容，混匀备用。同时做空白试验。
6.1.5.2 微波消解：称取0.5 g～2 g（精确至0.001g） 试样于消化管中，加10 mL 硝酸、2 mL 过氧
化氢，振摇混合均匀，于微波消化仪中消化，其消化推荐条件见表1（可根据不同的仪器自行设定消解
条件）：
表1 微波消化推荐条件
冷却后转入三角瓶中，加几粒玻璃珠，在电热板上继续加热至近干，切不可蒸干。再加5.0 mL 盐
酸（4.10），继续加热至溶液变为清亮无色并伴有白烟出现，将六价硒还原成四价硒。冷却，转移试样
STAGE POWER RAMP ℃ HOLD
1 1600 W 100% 6:00 120 ℃ 1:00
2 1600 W 100% 3:00 150 ℃ 5:00
3 1600 W 100% 5:00 200 ℃ 10:00
GB 5009.93—2010
3
消化液于25 mL 容量瓶中定容，混匀备用。同时做空白试验。
吸取10.0 mL 试样消化液于15 mL 离心管中，加盐酸（4.3）2.0 mL，铁氰化钾溶液（4.7）1.0 mL，
混匀待测。
6.2 标准曲线的配制
分别取 0.00 mL，0.10 mL，0.20 mL，0.30 mL，0.40 mL，0.50 mL 标准应用液于15 mL 离心管中用
去离子水定容至10 mL，再分别加盐酸（4.3）2 mL，铁氰化钾溶液（4.7）1.0 mL，混匀，制成标准工
作曲线。
6.3 测定
6.3.1 仪器参考条件：负高压：340 V；灯电流：100 mA；原子化温度：800 ℃；炉高：8 mm；载气
流速：500 mL/min；屏蔽气流速：1000 mL/min；测量方式：标准曲线法；读数方式：峰面积；延迟时
间：1 s；读数时间：15 s；加液时间：8 s；进样体积：2 mL。
6.3.2 测定： 设定好仪器最佳条件，逐步将炉温升至所需温度后，稳定10 min～20 min 后开始测量。
连续用标准系列的零管进样，待读数稳定之后，转入标准系列测量，绘制标准曲线。转入试样测量，分
别测定试样空白和试样消化液，每测不同的试样前都应清洗进样器。试样测定结果按7 计算。
7 分析结果的表述
按式（1）计算试样中硒的含量：
1000 1000
( 0) 1000
× ×
? × ×
=
m
X C C V ...................................................................（1）
式中：
X ——试样中硒的含量，单位为毫克每千克或毫克每升（mg/kg 或mg/L）；
C——试样消化液测定浓度，单位为纳克每毫升（ng/mL）；
C0——试样空白消化液测定浓度，单位为纳克每毫升（ng/mL）；
m ——试样质量（体积），单位为克或毫升（g 或mL）；
V ——试样消化液总体积，单位为毫升（mL）。
以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，结果保留三位有效数字。
8 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的 10 %。
第二法 荧光法
9 原理
将试样用混合酸消化，使硒化合物氧化为无机硒Se4+，在酸性条件下Se4+与2,3–二氨基萘
（2,3–Diaminonaphthalene，缩写为DAN）反应生成4,5–苯并苤硒脑（4,5–Benzo piaselenol），然后用
环己烷萃取。在激发光波长为376 nm，发射光波长为520 nm 条件下测定荧光强度，从而计算出试样中
硒的含量。
10 试剂和材料
GB 5009.93—2010
4
除非另有规定，本方法所使用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682 规定的三级水。
10.1 硒标准溶液：准确称取元素硒（光谱纯）100.0 mg，溶于少量浓硝酸中，加入2 mL 高氯酸（70 %~72
%），至沸水浴中加热3 h～4 h，冷却后加入8.4 mL HCl（盐酸浓度为0.1 mol/L）。再置沸水浴中煮
2min。准确稀释至1000 mL，此为储备液（Se 含量：100 μg/mL）。使用时用0.1 mol/L 盐酸将储备液
稀释至每毫升含0.05 μg 硒。于冰箱内保存，两年内有效。
10.2 DAN 试剂（1.0g/L）：此试剂在暗室内配制。称取DAN（纯度95%～98%）200 mg 于一带盖锥
形瓶中，加入0.1 mol/L 盐酸200 mL，振摇约15 min 使其全部溶解。加入约40 mL 环己烷，继续振荡5
min。将此液倒入塞有玻璃棉（或脱脂棉）的分液漏斗中，待分层后滤去环己烷层，收集DAN 溶液层，
反复用环己烷纯化直至环己烷中荧光降至最低时为止（约纯化5~6 次）。将纯化后的DAN 溶液储于棕
色瓶中，加入约1 cm 厚的环己烷覆盖表层，至冰箱内保存。必要时在使用前再以环己烷纯化一次。
警告：此试剂有一定毒性，使用本试剂的人员应有正规实验室工作经验。使用者有责任采取适当的安全和健康措施，
并保证符合国家有关规定的条例。
10.3 混合酸：将硝酸及高氯酸按9+1 体积混合。
10.4 去硒硫酸：取浓硫酸200 mL 缓慢倒入200 mL 水中，再加入48 %氢溴酸30 mL，混匀，至沙浴
上加热至出现白浓烟，此时体积应为200 mL。
10.5 EDTA 混合液
10.5.1 EDTA 溶液（0.2 mol/L）：称取EDTA 二钠盐37 g，加水并加热至完全溶解，冷却后稀释至
500 mL；
10.5.2 盐酸羟胺溶液（100 g/L）：称取10 g 盐酸羟胺溶于水中，稀释至100 mL；
10.5.3 甲酚红指示剂（0.2 g/L）：称取甲酚红50 mg 溶于少量水中，加氨水（1+1）1 滴，待完全溶
解后加水稀释至250 mL。
10.5.4 取EDTA 溶液（10.5.1）及盐酸羟胺溶液（10.5.2）各50 mL，加甲酚红指示剂（10.5.3）5 mL，
用水稀释至1 L，混匀。
10.6 氨水（1+1）。
10.7 盐酸。
10.8 环己烷：需先测试有无荧光杂质，否则重蒸后使用，用过的环己烷可回收，重蒸后再使用。
10.9 盐酸（1+9）。
11 仪器和设备
11.1 荧光分光光度计。
11.2 天平：感量为1mg。
11.3 烘箱。
11.4 粉碎机。
11.5 电热板。
11.6 水浴锅。
GB 5009.93—2010
5
12 分析步骤
12.1 试样处理
12.1.1 粮食
试样用水洗三次，至60 ℃烤箱中烘去表面水分，用粉碎机粉碎，储于塑料瓶内，放一小包樟脑精，
盖紧瓶塞保存，备用。
12.1.2 蔬菜及其他植物性食物
取可食部，用蒸馏水冲洗三次后，用纱布吸去水滴，不锈钢刀切碎，取一定量试样在烘箱中于60 ℃
烤干，称重，计算水分。粉碎，备用。
计算时应折合成鲜样重。
12.1.3 其它固体试样
粉碎、混匀试样，备用。
12.1.4 液体试样
混匀试样，备用。
12.2 试样的消化
称含硒量约为0.01 μg～0.5 μg 的粮食或蔬菜及动物性试样0.5 g～2 g（精确至0.001g），液体试样
吸取1.00mL～10.00 mL 于磨口锥形瓶内，加10 mL 5 %去硒硫酸，待试样湿润后，再加20 mL 混合酸
液放置过夜，次日置电热板上逐渐加热。当剧烈反应发生后，溶液呈无色，继续加热至白烟产生，此时
溶液逐渐变成淡黄色，即达终点。某些蔬菜试样消化后出现浑浊，以致难以确定终点，这时可注意瓶内
出现滚滚白烟，此刻立即取下，溶液冷却后又变为无色。有些含硒较高的蔬菜含有较多的Se6+，需要在
消化完成后再加10 mL 10%盐酸，继续加热，使再回终点，以完全还原Se6+为Se4+，否则结果将偏低。
12.3 测定
上述消化后的试样溶液加入20.0 mL EDTA 混合液，用氨水（10.6）及盐酸（10.9）调至淡红橙色
（pH 1.5～2.0）。以下步骤在暗室操作：加DAN 试剂（10.2）3.0 mL，混匀后，置沸水浴中加热5 min，
取出冷却后，加环己烷3.0 mL，振摇4 min，将全部溶液移入分液漏斗，待分层后弃去水层，小心将环
己烷层由分液漏斗上口倾入带盖试管中，勿使环己烷中混入水滴，于荧光分光光度计上用激发光波长
376 nm、发射光波长520 nm 测定4,5–苯并苤硒脑的荧光强度。
12.4 硒标准曲线绘制
准确量取标准硒溶液（0.05 μg/mL）0.00 mL，0.20 mL，1.00 mL，2.00 mL 及4.00 mL，相当于0.00
μg，0.01 μg，0.05 μg，0.10 μg 及0.20 μg 硒，加水至5.0 mL 后，按试样测定步骤同时进行测定。
当硒含量在0.5 μg 以下时荧光强度与硒含量呈线性关系，在常规测定试样时，每次只需做试剂空
白与试样硒含量相近的标准管（双份）即可。
12.5 分析结果的表述
试样中硒含量按式（2）计算：
m
F F
F F
X m 2 0
1 0
1 ?
×
?
= ………………………………………………… (2)
式中：
X——试样中硒含量，单位为微克每克或微克每毫升(μg /g 或μg /mL)；
GB 5009.93—2010
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m1——试管中硒的质量，单位为微克（μg）；
F1——标准硒荧光读数；
F2——试样荧光读数；
F0——空白管荧光读数；
m——试样质量，单位为克或毫升（g 或mL）。
以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，结果保留三位有效数字。
13 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的 10 %。
GB 5009.93—2010
食品安全国家标准
食品中硒的测定
National food safety standard
Determination of selenium in foods
中华人民共和国卫生部 发布
2010-03-26 发布 2010-06-01 实施
GB 5009.93—2010
I
前 言
本标准代替GB/T 5009.93-2003《食品中硒的测定》。
本标准所代替标准的历次版本发布情况为：
——GB/T 5009.93-2003；
——GB/T 12399-1996；
——GB 13105-1991。
GB 5009.93—2010
1
食品安全国家标准
食品中硒的测定
1 范围
本标准规定了用氢化物原子荧光光谱法和荧光法测定食品中硒的方法。
本标准适用于食品中硒的测定。
2 规范性引用文件
本标准中引用的文件对于本标准的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本
适用于本标准。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。
第一法氢化物原子荧光光谱法
3 原理
试样经酸加热消化后，在6 mo1/L 盐酸介质中，将试样中的六价硒还原成四价硒，用硼氢化钠或硼
氢化钾作还原剂，将四价硒在盐酸介质中还原成硒化氢（H2Se），由载气（氩气）带入原子化器中进
行原子化，在硒空心阴极灯照射下，基态硒原子被激发至高能态，在去活化回到基态时，发射出特征波
长的荧光，其荧光强度与硒含量成正比。与标准系列比较定量。
4 试剂和材料
除非另有规定，本方法所使用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682 规定的三级水。
4.1 硝酸：优级纯。
4.2 高氯酸：优级纯。
4.3 盐酸：优级纯。
4.4 混合酸：将硝酸与高氯酸按9：1 体积混合。
4.5 氢氧化钠：优级纯。
4.6 硼氢化钠溶液（8 g/L）：称取8.0 g 硼氢化钠（NaBH4），溶于氢氧化钠溶液（5 g/L）中，然后
定容至1000 mL，混匀。
4.7 铁氰化钾（100 g/L）：称取10.0 g 铁氰化钾[（K3Fe（CN）6）]，溶于100 mL 水中，混匀。
4.8 硒标准储备液：精确称取100.0 mg 硒（光谱纯），溶于少量硝酸中，加2 mL 高氯酸，置沸水浴
中加热3 h～4 h，冷却后再加8.4 mL 盐酸，再置沸水浴中煮2 min，准确稀释至1000 mL，其盐酸浓度
为0.1 mo1/L，此储备液浓度为每毫升相当于100 μg 硒。
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4.9 硒标准应用液：取100μg/mL 硒标准储备液1.0 mL，定容至100 mL，此应用液浓度为1μg /mL。
注：也可购买该元素有证国家标准溶液。
4.10 盐酸（6 mol/L）：量取50 mL 盐酸（4.3）缓慢加入40 mL 水中，冷却后定容至100 mL。
4.11 过氧化氢（30 %）。
5 仪器和设备
5.1 原子荧光光谱仪，带硒空心阴极灯。
5.2 电热板。
5.3 微波消解系统。
5.4 天平：感量为 1 mg。
5.5 粉碎机。
5.6 烘箱。
6 分析步骤
6.1 试样制备
6.1.1 粮食：试样用水洗三次，于 60 ℃烘干，粉碎，储于塑料瓶内，备用。
6.1.2 蔬菜及其他植物性食物：取可食部用水洗净后用纱布吸去水滴，打成匀浆后备用。
6.1.3 其它固体试样：粉碎，混匀，备用。
6.1.4 液体试样：混匀，备用。
6.1.5 试样消解
6.1.5.1 电热板加热消解：称取0.5 g～2 g（精确至0.001g）试样，液体试样吸取1.00mL～10.00 mL，
置于消化瓶中，加10.0 mL 混合酸及几粒玻璃珠，盖上表面皿冷消化过夜。次日于电热板上加热，并及
时补加硝酸。当溶液变为清亮无色并伴有白烟时，再继续加热至剩余体积2 mL 左右，切不可蒸干。冷
却，再加5.0 mL 盐酸（4.10），继续加热至溶液变为清亮无色并伴有白烟出现，将六价硒还原成四价
硒。冷却，转移至50 mL 容量瓶中定容，混匀备用。同时做空白试验。
6.1.5.2 微波消解：称取0.5 g～2 g（精确至0.001g） 试样于消化管中，加10 mL 硝酸、2 mL 过氧
化氢，振摇混合均匀，于微波消化仪中消化，其消化推荐条件见表1（可根据不同的仪器自行设定消解
条件）：
表1 微波消化推荐条件
冷却后转入三角瓶中，加几粒玻璃珠，在电热板上继续加热至近干，切不可蒸干。再加5.0 mL 盐
酸（4.10），继续加热至溶液变为清亮无色并伴有白烟出现，将六价硒还原成四价硒。冷却，转移试样
STAGE POWER RAMP ℃ HOLD
1 1600 W 100% 6:00 120 ℃ 1:00
2 1600 W 100% 3:00 150 ℃ 5:00
3 1600 W 100% 5:00 200 ℃ 10:00
GB 5009.93—2010
3
消化液于25 mL 容量瓶中定容，混匀备用。同时做空白试验。
吸取10.0 mL 试样消化液于15 mL 离心管中，加盐酸（4.3）2.0 mL，铁氰化钾溶液（4.7）1.0 mL，
混匀待测。
6.2 标准曲线的配制
分别取 0.00 mL，0.10 mL，0.20 mL，0.30 mL，0.40 mL，0.50 mL 标准应用液于15 mL 离心管中用
去离子水定容至10 mL，再分别加盐酸（4.3）2 mL，铁氰化钾溶液（4.7）1.0 mL，混匀，制成标准工
作曲线。
6.3 测定
6.3.1 仪器参考条件：负高压：340 V；灯电流：100 mA；原子化温度：800 ℃；炉高：8 mm；载气
流速：500 mL/min；屏蔽气流速：1000 mL/min；测量方式：标准曲线法；读数方式：峰面积；延迟时
间：1 s；读数时间：15 s；加液时间：8 s；进样体积：2 mL。
6.3.2 测定： 设定好仪器最佳条件，逐步将炉温升至所需温度后，稳定10 min～20 min 后开始测量。
连续用标准系列的零管进样，待读数稳定之后，转入标准系列测量，绘制标准曲线。转入试样测量，分
别测定试样空白和试样消化液，每测不同的试样前都应清洗进样器。试样测定结果按7 计算。
7 分析结果的表述
按式（1）计算试样中硒的含量：
1000 1000
( 0) 1000
× ×
? × ×
=
m
X C C V ...................................................................（1）
式中：
X ——试样中硒的含量，单位为毫克每千克或毫克每升（mg/kg 或mg/L）；
C——试样消化液测定浓度，单位为纳克每毫升（ng/mL）；
C0——试样空白消化液测定浓度，单位为纳克每毫升（ng/mL）；
m ——试样质量（体积），单位为克或毫升（g 或mL）；
V ——试样消化液总体积，单位为毫升（mL）。
以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，结果保留三位有效数字。
8 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的 10 %。
第二法 荧光法
9 原理
将试样用混合酸消化，使硒化合物氧化为无机硒Se4+，在酸性条件下Se4+与2,3–二氨基萘
（2,3–Diaminonaphthalene，缩写为DAN）反应生成4,5–苯并苤硒脑（4,5–Benzo piaselenol），然后用
环己烷萃取。在激发光波长为376 nm，发射光波长为520 nm 条件下测定荧光强度，从而计算出试样中
硒的含量。
10 试剂和材料
GB 5009.93—2010
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除非另有规定，本方法所使用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682 规定的三级水。
10.1 硒标准溶液：准确称取元素硒（光谱纯）100.0 mg，溶于少量浓硝酸中，加入2 mL 高氯酸（70 %~72
%），至沸水浴中加热3 h～4 h，冷却后加入8.4 mL HCl（盐酸浓度为0.1 mol/L）。再置沸水浴中煮
2min。准确稀释至1000 mL，此为储备液（Se 含量：100 μg/mL）。使用时用0.1 mol/L 盐酸将储备液
稀释至每毫升含0.05 μg 硒。于冰箱内保存，两年内有效。
10.2 DAN 试剂（1.0g/L）：此试剂在暗室内配制。称取DAN（纯度95%～98%）200 mg 于一带盖锥
形瓶中，加入0.1 mol/L 盐酸200 mL，振摇约15 min 使其全部溶解。加入约40 mL 环己烷，继续振荡5
min。将此液倒入塞有玻璃棉（或脱脂棉）的分液漏斗中，待分层后滤去环己烷层，收集DAN 溶液层，
反复用环己烷纯化直至环己烷中荧光降至最低时为止（约纯化5~6 次）。将纯化后的DAN 溶液储于棕
色瓶中，加入约1 cm 厚的环己烷覆盖表层，至冰箱内保存。必要时在使用前再以环己烷纯化一次。
警告：此试剂有一定毒性，使用本试剂的人员应有正规实验室工作经验。使用者有责任采取适当的安全和健康措施，
并保证符合国家有关规定的条例。
10.3 混合酸：将硝酸及高氯酸按9+1 体积混合。
10.4 去硒硫酸：取浓硫酸200 mL 缓慢倒入200 mL 水中，再加入48 %氢溴酸30 mL，混匀，至沙浴
上加热至出现白浓烟，此时体积应为200 mL。
10.5 EDTA 混合液
10.5.1 EDTA 溶液（0.2 mol/L）：称取EDTA 二钠盐37 g，加水并加热至完全溶解，冷却后稀释至
500 mL；
10.5.2 盐酸羟胺溶液（100 g/L）：称取10 g 盐酸羟胺溶于水中，稀释至100 mL；
10.5.3 甲酚红指示剂（0.2 g/L）：称取甲酚红50 mg 溶于少量水中，加氨水（1+1）1 滴，待完全溶
解后加水稀释至250 mL。
10.5.4 取EDTA 溶液（10.5.1）及盐酸羟胺溶液（10.5.2）各50 mL，加甲酚红指示剂（10.5.3）5 mL，
用水稀释至1 L，混匀。
10.6 氨水（1+1）。
10.7 盐酸。
10.8 环己烷：需先测试有无荧光杂质，否则重蒸后使用，用过的环己烷可回收，重蒸后再使用。
10.9 盐酸（1+9）。
11 仪器和设备
11.1 荧光分光光度计。
11.2 天平：感量为1mg。
11.3 烘箱。
11.4 粉碎机。
11.5 电热板。
11.6 水浴锅。
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12 分析步骤
12.1 试样处理
12.1.1 粮食
试样用水洗三次，至60 ℃烤箱中烘去表面水分，用粉碎机粉碎，储于塑料瓶内，放一小包樟脑精，
盖紧瓶塞保存，备用。
12.1.2 蔬菜及其他植物性食物
取可食部，用蒸馏水冲洗三次后，用纱布吸去水滴，不锈钢刀切碎，取一定量试样在烘箱中于60 ℃
烤干，称重，计算水分。粉碎，备用。
计算时应折合成鲜样重。
12.1.3 其它固体试样
粉碎、混匀试样，备用。
12.1.4 液体试样
混匀试样，备用。
12.2 试样的消化
称含硒量约为0.01 μg～0.5 μg 的粮食或蔬菜及动物性试样0.5 g～2 g（精确至0.001g），液体试样
吸取1.00mL～10.00 mL 于磨口锥形瓶内，加10 mL 5 %去硒硫酸，待试样湿润后，再加20 mL 混合酸
液放置过夜，次日置电热板上逐渐加热。当剧烈反应发生后，溶液呈无色，继续加热至白烟产生，此时
溶液逐渐变成淡黄色，即达终点。某些蔬菜试样消化后出现浑浊，以致难以确定终点，这时可注意瓶内
出现滚滚白烟，此刻立即取下，溶液冷却后又变为无色。有些含硒较高的蔬菜含有较多的Se6+，需要在
消化完成后再加10 mL 10%盐酸，继续加热，使再回终点，以完全还原Se6+为Se4+，否则结果将偏低。
12.3 测定
上述消化后的试样溶液加入20.0 mL EDTA 混合液，用氨水（10.6）及盐酸（10.9）调至淡红橙色
（pH 1.5～2.0）。以下步骤在暗室操作：加DAN 试剂（10.2）3.0 mL，混匀后，置沸水浴中加热5 min，
取出冷却后，加环己烷3.0 mL，振摇4 min，将全部溶液移入分液漏斗，待分层后弃去水层，小心将环
己烷层由分液漏斗上口倾入带盖试管中，勿使环己烷中混入水滴，于荧光分光光度计上用激发光波长
376 nm、发射光波长520 nm 测定4,5–苯并苤硒脑的荧光强度。
12.4 硒标准曲线绘制
准确量取标准硒溶液（0.05 μg/mL）0.00 mL，0.20 mL，1.00 mL，2.00 mL 及4.00 mL，相当于0.00
μg，0.01 μg，0.05 μg，0.10 μg 及0.20 μg 硒，加水至5.0 mL 后，按试样测定步骤同时进行测定。
当硒含量在0.5 μg 以下时荧光强度与硒含量呈线性关系，在常规测定试样时，每次只需做试剂空
白与试样硒含量相近的标准管（双份）即可。
12.5 分析结果的表述
试样中硒含量按式（2）计算：
m
F F
F F
X m 2 0
1 0
1 ?
×
?
= ………………………………………………… (2)
式中：
X——试样中硒含量，单位为微克每克或微克每毫升(μg /g 或μg /mL)；
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m1——试管中硒的质量，单位为微克（μg）；
F1——标准硒荧光读数；
F2——试样荧光读数；
F0——空白管荧光读数；
m——试样质量，单位为克或毫升（g 或mL）。
以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，结果保留三位有效数字。
13 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的 10 %。
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